王书珍,金卫斌,项俊,郑永良,方元平,干建平,程华,杜航
(经济林木种质改良与资源综合利用湖北省重点实验室/黄冈师范学院生命科学学院,湖北黄冈 438000)
摘要:利用FIASCO方法(Fast Isolation by AFLP Sequences COntaining repeats)构建杜鹃(Rhododendron simsii Planch.)的(AG)n微卫星富集文库。通过菌液PCR检测,从(AG)n微卫星富集文库的356个阳性菌落中筛选了233个进行测序分析。结果表明,202个序列富含SSR位点,阳性比率达86.7%。去除杂峰、叠峰、信号弱的序列,最终筛选39个供后续引物开发使用,其中完美型SSR有22个,不完美型5个,混合型12个。磁珠富集法构建杜鹃基因组微卫星文库是一条高效可行的途径,为微卫星位点的分离、杜鹃种群遗传多样性和遗传结构的研究奠定了基础。
教育期刊网 http://www.jyqkw.com
关键词 :杜鹃(Rhododendron simsii Planch.);微卫星;探针;富集文库
中图分类号:S685.21;Q343.1文献标识码:A文章编号:0439-8114(2015)03-0627-04
杜鹃花(Rhododendron spp.)泛指杜鹃花科(Ericaceae)杜鹃花属(Rhododendron)植物,具有极高的观赏价值,并被誉为“花中西施”和“木本花卉之王”[1,2]。杜鹃花在亚洲、欧洲、北美洲等地广泛分布,并且因气候条件不同而垂直分布明显,从而形成了常绿大乔木、常绿小乔木、常绿灌木、落叶灌木等不同形态特征的地理居群[3]。杜鹃花兼有美学观赏、生态保护、药用治疗、科学研究等价值[1]。杜鹃花属近1 000种,中国有571种,其中特有种多达400多个[4]。在中国,云南、西藏、四川三省(自治区)交汇处的横断山脉是世界杜鹃花的发源地和分布中心[5]。近几年来,在气候变化与人类活动日渐加剧的大背景下,杜鹃花的种质资源也受到不同程度的影响,甚至出现退化现象。因此,亟须对现有的杜鹃花资源进行科学的评价,并制定切实可行的遗传保护策略。
微卫星(Microsatellite),又称简单重复序列(Simple sequence repeat,SSR),是以1~6 bp核苷酸为重复单位且均匀分布于生物基因组中的串联重复序列。微卫星标记因其分布广泛、多态性强、信息含量丰富、遗传稳定性好、共显性遗传等特点,而被广泛应用于作物的遗传结构分析、遗传育种、图谱构建、基因定位、亲缘关系分析及种质资源鉴定等研究中[6-9]。Naito等[10]率先从R. metternichii基因组内开发了SSR分子标记。Tan等[11]从 R. simsii 基因组内开发了8个SSR标记。Wang等[12]从R. decorum基因组内开发了24个微卫星标记。Wang 等[13]从 R. delavayi 和 R. decorum基因组内开发了38对SSR引物,其中9对可以跨物种扩增。Delmas等[14]Charrier等[15]用454 焦磷酸测序技术从R. ferrugineum基因组内开发了18个微卫星标记。
现有的SSR标记难以满足对杜鹃花种群的遗传变异特征、基因流、种群进化历史、遗传图谱构建等研究中对微卫星标记数量的需求。因此,本研究以(AG)n为探针构建杜鹃花特有种杜鹃(Rhododendron simsii Planch.)的基因组微卫星富集文库,旨在为杜鹃花群体遗传学分析、遗传图谱构建、花期性状基因的关联分析、QTL定位等研究提供高效的SSR标记。
1材料与方法
1.1材料
1.1.1材料来源杜鹃样品取自湖北省麻城市龟峰山山顶“杜鹃花王”的幼嫩叶片。样品采集后置于自封袋内,并放入冰盒中,带回实验室置-80 °C冰箱备用。
1.1.2试剂DNA限制性内切酶MseI、T4 DNA连接酶购自NEB(NewEngland Biolabs)。Taq DNA 聚合酶、dNTPs均购天根生物公司。链霉亲和素磁珠M-280试剂盒(Dynalbeads M-280 Streptavidin,112-05D)、磁珠收集器(Dynal MPC,123-20D)购于Invitrogen。克隆载体pMD18-T购于TaKaRa,转化用的大肠杆菌TOP10感受态细胞由经济林木种质改良与资源综合利用湖北省重点实验室保存。AFLP接头序列Oligo-MseI-A(5′-TACTCAGGACTCAT-3′)和Oligo-MseI-B(5′-GACGATGAGTCCTGAG-3′)由上海生工生物工程技术服务有限公司合成。生物素标记的(AG)n探针由Invitrogen生物公司合成: 5′-Biotin-(AG)13。MseI-N混合组由上海生工生物工程技术服务有限公司合成:5′-GATGAGTCCTGAGTAAN-3′,N=A, T, G, C。M13通用引物由南京金斯瑞生物公司合成。
1.2 方法
1.2.1基因组DNA 提取DNA提取方法参照改良的CTAB提取法[16],并略作修改。提取的“杜鹃花王”基因组DNA经0.8%琼脂糖凝胶电泳检测和紫外分光光度计检测后,记录原始结果,并将基因组DNA稀释至终浓度为100 ng/μL,-20 ℃保存备用。
1.2.2微卫星富集文库的构建参照FIASCO(Fast Isolation by AFLP of Sequences COntaining repeats)方法构建微卫星富集文库[17]。利用MseI 限制性内切酶对1 μg的基因组DNA进行酶切,酶切成功的标准是出现100~1 000 bp的弥散带谱;将酶切后的基因组 DNA 片段回收并加 Mse I接头(Oligo-MseI A 和Oligo-MseI B);利用Mse I-N引物对连接片段进行预扩增(12/14/16/18/20个循环),筛选扩增产物刚刚能在琼脂糖凝胶上呈现的扩增产物(100~1 000 bp);将预扩增产物先后与Biotin-(AG)13 探针和链霉亲和素包被的磁珠进行杂交,经过系列非严格洗脱和严格洗脱后回收目的DNA片段;对回收的DNA片段进行30个循环的PCR扩增,回收200~800 bp的片段,与pMD18-T载体进行TA克隆并转化到大肠杆菌TOP10感受态细胞内,涂布在含有氨苄霉素的培养基上。
1.2.3阳性克隆的测序及分析经氨苄抗性筛选和IPTG诱导后,挑取白色克隆。以M13通用引物进行菌液PCR检测,扩增产物在1%的琼脂糖凝胶上电泳分析,挑取扩增片段大于500 bp的克隆交由南京金斯瑞生物科技有限公司测序。以M13通用引物进行双向测序,序列比对拼接后用在线软件VecScreen(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/VecScreen/)去除载体序列和MseI接头序列。利用软件TRF(Tandem repeat finder,version 3.2.1)[17]查找序列的微卫星位点。按照Weber[18]的微卫星分类标准对杜鹃花基因组SSR位点进行分类。
2结果与分析
2.1提取的杜鹃基因组DNA
提取的“杜鹃花王”基因组DNA在0.8%的琼脂糖凝胶上呈现比较完整的DNA条带,条带大于20 kb,并且无明显的DNA降解现象(图1)。利用紫外分光光度计对提取的“杜鹃花王”基因组DNA进行检测,发现改良的CTAB法所提取的杜鹃花基因组DNA浓度和纯度均比较好,OD260 nm/OD280 nm=1.746 3,DNA的浓度为3.76 μg/μL。因此,提取的DNA适合后续杜鹃花微卫星富集文库的构建。
2.2微卫星富集文库的构建以及鉴定
对1 μg“杜鹃花王”基因组DNA的酶切结果见图2,与未处理的对照样品相比,经MseI限制性内切酶酶切的DNA呈弥散带型,并且大小分布在100~1 000 bp之间,符合微卫星富集文库构建的要求。将回收后的酶切片段与MseI接头相连,并对连接产物进行预扩增。根据文献资料,设置不同的循环进行扩增。对比发现,16个循环的扩增产物在琼脂糖凝胶上刚刚能够呈现,小于14个循环的扩增产物太少而不适合下游的磁珠富集,而多于18个循环的扩增产物过多,会导致下游阳性克隆子重复出现,因此选择16个循环的扩增产物与Biotin-(AG)13探针进行杂交。经多次杂片段的洗脱后,采用95 ℃预热的TE溶液洗脱与探针杂交的目的片段,扩增30个循环,并进行TA克隆转化到大肠杆菌TOP10细胞内构建微卫星富集文库。经氨苄抗性筛选和IPTG诱导后,从平板上挑取了356个克隆子。经菌液PCR检测,挑取233个克隆片段大于500 bp的克隆交由测序公司测序(图3)。
2.3测序分析
对上述测序的克隆,舍弃杂峰、信号弱的序列,最终得到(AG)n微卫星富集文库的202条序列片段,部分测序结果见图4。在富含微卫星位点的202条序列内,有26个序列在微卫星位点的下游出现了叠峰;还有31个序列在微卫星位点的上游侧翼序列过短,不适合后续的SSR引物设计;6个克隆与其他序列有重复。因此,最后挑选了139个序列供后续研究。
利用在线TRF软件对139条微卫星序列片段进行分析,(AG)n文库内序列的主要重复类型为(AG)n、(GA)n、(CT)n、(TC)n,以及由这些微卫星重复单元组成的复合型微卫星。在所检测的微卫星位点内,重复次数最少为8次,最多可达36次,主要重复次数分布在22~31之间。不完美型的微卫星位点,重复序列之间插入的碱基数为3~7个,以胞嘧啶和鸟嘌呤核苷酸碱基居多。复合型微卫星内既有(TC)n与(TA)n双碱基重复的混合类型,也有(GA)n与(AT)n混合的类型,更有Cn和(CT)n类型的重复组合。
利用Primer Premier 5.0软件对重复次数大于12的序列进行分析,有39个序列能够设计出得分大于85分的SSR引物,可用于SSR引物开发的序列。这39个序列内部的微卫星类型、5′核心序列、3′端侧翼序列如表1所示。依据Weber[19]提出的标准为序列进行分类,发现杜鹃的微卫星富集文库内以完美型微卫星类型居多:完美型SSR有22个,占56.41%;不完美型5个,占12.82%;混合型SSR有12个,占30.77%。
3小结与讨论
在湖北麻城的龟峰山风景区内,有着连片面积达6 000多公顷的杜鹃花灌木丛,建群种主要是杜鹃。该杜鹃群落的平均树龄在100~300年之间,而被誉为“杜鹃花王”的树龄大于500年,是世界上迄今为止发现的面积最大、品种最纯、分布最集中的野生古杜鹃群落。龟峰山风景区的杜鹃特有种和变种不仅为湖北省生态旅游业的发展奠定了基础,也为杜鹃的遗传育种提供了优良的材料[6]。因此,亟须对麻城杜鹃种质资源进行研究,而SSR标记的开发是首要任务,微卫星富集文库的构建则是从基因组信息未知的物种内开发SSR标记的前提。
微卫星标记可以通过基因组分离、数据库挖掘、近缘物种转移等途径获得。微卫星标记的开发是一件繁琐且耗时的工作,传统的微卫星分离方法效率低且耗时,阳性率多为0.04%~12%[20]。本研究通过对基因组DNA的MseI酶切、特定接头的连接、MseI-N简并引物的PCR预扩增、生物素探针杂交、磁珠富集、多次洗脱、回收目的片段等途径构建了杜鹃花(AG)n微卫星富集文库,阳性克隆比率高达86.7%。
在构建(AG)n文库的同时,也同时利用生物素标记的(AT)13、(GCC)9、(CTAT)6探针构建富集文库,但最终只从筛选平板上各挑取了15、9、7个克隆,测序分析均为阴性,可能的原因是杜鹃花基因组内(AT)n、(GCC)n、(CTAT)n类型的微卫星位点比较少见。在(AG)n文库的构建过程中,选择的是(AG)13探针,主要是因为探针中碱基的增加会直接影响杂交退火温度和杂交的效率,而碱基过少则影响阳性克隆率。
采用菌液PCR技术对克隆子进一步筛选,扩增片段长度大于500 bp的克隆才会进行下一步的测序分析。M13通用引物所扩增的片段包括载体序列和外源插入序列,因此如果片段过短,即便是含有微卫星位点,其两侧也没有足够的侧翼序列供SSR引物的开发,因此选择片段长度大于500 bp的克隆。据以往在莲、苦瓜、慈姑等物种内的研究经验,重复次数大于12的二碱基微卫星位点在群体内的多态性比较丰富[17]。因此,结合Primer Premier 5.0软件的分析结果,最终筛选39个序列以供后期杜鹃花基因组SSR引物的设计。
综上所述,FIASCO富集法能够有效地从杜鹃基因组DNA内分离到微卫星座位,在所测序的233个克隆内,202个序列富含SSR位点,阳性比率高达86.7%,便于后续的引物设计与开发,同时为麻城龟峰山杜鹃种质资源现状的遗传评估、遗传结构分析、遗传图谱构建、目标性状关联分析、QTL定位、种群进化潜力和进化路线的研究奠定了基础。
教育期刊网 http://www.jyqkw.com
参考文献:
[1] 康用权,彭春良,廖菊阳,等.湖南杜鹃花资源及其开发利用[J].中南林业科技大学学报,2010,30(8):57-63.
[2] 鲜小林,陈睿,秦帆,等.四川杜鹃花资源调查及其育种意义研究[J].北方园艺,2012(2):92-96.
[3] 冯国楣.花中西施杜鹃花[J].园林,2008(12):124-125.
[4] 赵喜华,张乐华,王曼莹.11种杜鹃花RAPD分类学初步研究[J].江西农业大学学报,2006,28(4):544-547.
[5] WANG X Q, HUANG Y A, LONG C L. Cross-amplification and characterization of microsatellite loci for the genus Rhododendron[J]. Hortscience, 2010, 45(9): 1394-1397.
[6] 彭婵,张新叶,杨彦伶,等.湖北麻城杜鹃古群落遗传多样性研究[J].湖北林业科技,2010(4):26-30.
[7] GAO G Q, HE G H, LI Y R. Microsatellite enrichment from AFLP fragments by magnetic beads[J]. Acta Botanica Sinica, 2003, 45(11): 1266-1269.
[8] ZHAO D, YANG J, YANG S, et al. Genetic diversity and domestication origin of tea plant Camellia taliensis (Theaceae) as revealed by microsatellite markers[J]. BMC Plant Biology, 2014, 14(1): 14.
[9] RAGHAMI M, L PEZ-SES A I, HASANDOKHT M R, et al. Genetic diversity among melon accessions from Iran and their relationships with melon germplasm of diverse origins using microsatellite markers[J]. Plant Systematics and Evolution, 2014, 300(1): 139-151.
[10] NAITO K, ISAGI Y, NAKAGOSHI N. Isolation and characterization of microsatellites of Rhododendron metternichii Sieb. et Zucc. var. hondoense Nakai[J]. Molecular Ecology, 1998, 7: 927-928.
[11] TAN X X, LI Y, GE X J. Development and characterization of eight polymorphic microsatellites for Rhododendron simsii Planch.(Ericaceae)[J]. Conservation Genetics, 2009, 9(1): 326-329.
[12] WANG X, HUANG Y, LONG C. Isolation and characterization of twenty-four microsatellite loci for Rhododendron decorum Franch.(Ericaceae)[J]. HortScience, 2009, 44(7): 2028-2030.
[13] WANG X Q, HUANG Y A, LONG C L. Cross-amplification and characterization of microsatellite loci for the genus Rhododendron[J]. Hortscience, 2010, 45(9): 1394-1397.
[14] DELMAS C E L, LHUILLIER E, PORNON A, et al.Isolationandcharacterizationof microsatellitelociinRhododendronferrugineum(Ericaceae) usingpyrosequencing technology[J]. American Journal of Botany,2011,98(5): e120-e122.
[15] CHARRIER O, DELMAS C E L, PORNON A, et al. Development of 18 microsatellite markers in Rhododendron ferrugineum(Ericaceae) for investigating genetic structure at margins[J]. Conservation Genetics Resources, 2013, 5(2): 473-477.
[16] 张艳红,沈向群,刘旭颖,等.北方露地杜鹃DNA的提取[J].江苏农业科学,2011(1):31-32.
[17] WANG S Z, PAN L, HU K, et al. Development and characterization of polymorphic microsatellite markers in Momordica charantia(Cucurbitaceae)[J]. American Journal of Botany, 2010, 97(8): e75-e78.
[18] WEBER J L, MAY P E. Abundant class of human DNA polymorphisms which can be typed using the polymerase chain reaction[J]. American Journal of Human Genetics, 1989, 44: 388-396.
[19] WEBER J L. Informativeness of human (dC-dA)-(dG-dT)n polymorphisms[J]. Genomics, 1990, 7(4):524-530.
[20] ZANE L, BARGELLONI L, PATARNELLO T. Strategies for microsatellite isolation:A review[J]. Molecular Ecology, 2002, 11(1): 1-16.