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HPLC测定伊赫乌兰- 13中苦参碱的含量

  • 投稿赵勇
  • 更新时间2015-09-24
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邹继红1,王洪斌2,赵春杰3

(1.赤峰学院 医学院,内蒙古 赤峰 024000;2.赤峰市传染病防治医院,内蒙古 赤峰 024000;

3.沈阳药科大学 药学院,辽宁 沈阳 110016)

摘 要:目的:建立测定伊赫乌兰-13中苦参碱含量的HPLC法.方法:采用Shim-pack C18柱,流动相为甲醇-0.1%磷酸-乙腈=10∶9∶6(三乙胺调pH7.2),检测波长为210nm,流速为1.0mL·min-1.结果:苦参碱的浓度在8.4μg·mL-1~84μg·mL-1范围内与峰面积呈良好的线性,回归方程为:Y=46.003X-1.206,(r=0.9999);平均加样回收率为98.9%,RSD=1.4%(n=9).结论:建立的方法简便、快速、准确,适用于控制伊赫乌兰-13中苦参碱的含量.

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关键词 :HPLC;苦参碱;伊赫乌兰-13;含量测定

中图分类号:R927.2文献标识码:A文章编号:1673-260X(2015)08-0062-02

基金项目:内蒙古自然科学基金资助项目(2013MS1217)

蒙药伊赫乌兰-13由土木香、苦参、栀子、茜草、悬钩子木、山柰、诃子、川楝子、枇杷叶、紫草茸、橡子、紫草、金莲花组成,具有清血热之功效,临床上主要用于头痛、血热上盛、目赤、高血压等病症[1].对于方中主药苦参中苦参碱的含量测定,作者未见其他文献报道,为了合理有效控制该制剂的内在质量,作者参考部分相关文献,以苦参的活性成分苦参碱作为测定指标,采用HPLC测定其含量,经过方法学考察证明该方法操作简便,重现性良好,专属性较强,方中其它组分对苦参碱的测定无干扰,可作为伊赫乌兰-13的质量控制方法.

1 试剂与仪器

1.1 试剂

苦参碱对照品(中国药品生物制品检定所,批号:110805-201401);用于配制流动相的甲醇和乙腈均为色谱纯,用于提取样品的甲醇为分析纯,磷酸、氨水、三氯甲烷、无水乙醇与三乙胺为分析纯;娃哈哈纯净水.蒙药伊赫乌兰-13(内蒙古民族大学附属医院蒙药制剂室,批号:20140107,20140502,20140706);阴性对照品的药材(购自内蒙古赤峰市中蒙医院).

1.2 仪器

Agilent 1200高效液相色谱仪;KQ-250E型超声波清洗器;METTLER AE240电子天平;UV765紫外可见分光光度计;HH-6数显恒温水浴锅;pHS-3C酸度计.

2 方法与结果

2.1 色谱条件

色谱柱为Shim-pack C18色谱柱(250mm×4.6mm,内径5μm),柱温为室温,流动相为乙腈-甲醇-0.1%磷酸=6∶10∶9(用三乙胺调节pH为7.2),检测波长为210nm,流速为1.0mL·min-1,进样体积为20μL.

2.2 溶液的制备

2.2.1 苦参碱对照品溶液的配制

取10.5mg苦参碱对照品,精密称定,置25mL量瓶中,加流动相适量使之溶解,并稀释至刻度,摇匀,得到420μg·mL-1的苦参碱对照品贮备液.精密吸取该贮备液0.2、0.4、0.8、1.2、1.6和2.0mL,分别置10mL量瓶中,用流动相稀释至刻度,得到一系列苦参碱的对照品溶液.

2.2.2 供试品溶液的制备

取研细的伊赫乌兰-13细粉5.0g,精密称定,置于250mL具塞锥形瓶中,加入氨水5mL使润湿,再加无水乙醇50mL,密塞,超声处理30min,放冷,滤过,滤器与容器用无水乙醇20mL分4次洗涤,合并洗液与滤液,水浴蒸干,残渣用无水乙醇溶解,定容至10mL,摇匀.用0.45μm微孔滤膜滤过,制得供试品溶液.

2.2.3 阴性样品溶液的制备

按处方要求制备不含苦参碱药材的样品,同法制成阴性样品溶液,滤过.

2.3 专属性测试

取阴性样品溶液、苦参碱对照品溶液和供试品溶液,按“2.1”项的色谱条件,分别进样20μL,测定,色谱图如图1所示.由图可知:苦参碱的保留时间约7.2min,阴性样品对苦参碱的测定无干扰,苦参碱与其他组分可达到基线分离.

2.4 线性范围的测试

分别精密吸取系列苦参碱对照品溶液20μL,注入液相色谱仪,测定峰面积,以峰面积为纵坐标,苦参碱的浓度(μg·mL-1)为横坐标,进行线性回归,回归方程为:Y=46.003X–1.206,(r=0.9999).结果表明:苦参碱的浓度在8.4μg·mL-1~84μg·mL-1范围内与峰面积呈良好的线性.

2.5 精密度测试

精密吸取50.4μg·mL-1的苦参碱对照品溶液和供试品溶液各20μL,注入高效液相色谱仪,测定峰面积,重复6次,对照品的RSD=0.4%,样品的RSD=1.2%,结果表明仪器的精密度良好.

2.6 稳定性测试

精密吸取同一份供试品溶液,分别于室温放置0、1、2、4、6、8、10h,注入色谱仪,测定峰面积.苦参碱峰面积的RSD=1.3%,结果表明供试品溶液在10h内保持稳定.

2.7 重复性测试

精密称取同一批样品(批号:20140903),按“2.2”项下的方法制备供试品溶液6份,按“2.1”项的色谱条件进样测定.样品中苦参碱的平均含量为0.085mg·g-1,RSD=1.1%,结果表明方法的重复性良好.

2.8 加样回收率试验

精密称取4.0g已知苦参碱含量的同一批(批号:20140903,含量为0.085mg·g-1)样品粉末9份,分别精密加入210μg·mL-1的苦参碱对照品溶液1.6、1.8和2.0mL,按“2.2”项方法处理,精密吸取20μL,注入色谱仪,测定峰面积,计算苦参碱的回收率,结果见表1.

2.9 样品测定

取3个批号的样品,按“2.2”项方法处理后,精密吸取供试品溶液和苦参碱对照品溶液各20μL,注入液相色谱仪,测定峰面积,外标法计算苦参碱的含量,结果见表2.

3 讨论

采用UV-765紫外-可见分光光度计扫描苦参碱对照品溶液的紫外吸收光谱,苦参碱的最大吸收波长为210nm,故测定时选取210nm为测定波长.在筛选流动相的过程中,参考相关文献尝试采用甲醇-水-四氢呋喃[2-4]、甲醇- 0.1%磷酸溶液[5-6]等作为流动相,但苦参碱的色谱峰严重拖尾.经多次试验,最后当采用甲醇-乙腈-0.1%磷酸=10∶6∶9(用三乙胺调pH为7.2)时,苦参碱的拖尾因子合格,与其他组分分离良好,而且流动相的组成简单,容易配制.实验过程中将无水乙醇、甲醇和三氯甲烷提取后样品中苦参碱的含量进行对比,结果发现无水乙醇的提取率高,杂质峰少,分离度合格,且试剂的毒性低,所以最终采用无水乙醇为提取溶剂.

此外,还测定了超声提取20、30和40min的样品,结果发现提取30min和40min的样品中苦参碱的含量比较接近,所以最终采用超声30min.

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参考文献

(1)中华人民共和国药典委员会.中华人民共和国卫生部药品标准·蒙药分册[S].1998.73.

(2)李雨生.乌兰十味散中苦参碱的含量测定[J].北方药学,2010,7(2):41-42.

(3)周桂坤,莫日根高娃,哈斯高娃,等.RP-HPLC法测定乌兰三味汤散中苦参碱的含量[J].中国药事,2003,17(10):624-626.

(4)李丽.HPLC法测定蒙药乌兰三味汤散剂中茜草素含量[J].中国民族医药杂志,2012(6):51-52.

(5)姜哲,孙良鹏,许红兰.反相高效液相色谱法测定不同地区不同采集期茜草中茜草素的含量[J].时珍国医国药,2008,19(7):1719-1720.

(6)张宁,杨晓宏,马晓帆.HPLC法测定十三味菥蓂胶囊中苦参碱的含量[J].药物分析杂志,2007,27(9):1475-1477.