李 清ａ，周以飞ａ，刘崟艳ｂ，柯兰兰ｃ，霍昱璟ｃ，潘大仁ｃ
（福建农林大学，ａ．作物科学学院；ｂ．农村发展学院；ｃ．生命科学学院，福州 ３５０００２）
摘要：采用不同浓度的水杨酸、赤霉素和脱落酸处理泽泻植株，研究不同诱导子对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ积累的影响。结果表明，水杨酸、赤霉素和脱落酸在低浓度下都能促进泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的积累，在高浓度下则表现出一定的抑制作用。１５０ μｇ／ｍＬ的水杨酸处理第８天时，２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量为７１５．４ μｇ／ｇ，为所有处理中的最大值。赤霉素和脱落酸的处理效果与水杨酸相比较差。
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关键词 ：泽泻；２３－乙酰泽泻醇Ｂ；诱导子
中图分类号：Ｑ９４９．７１＋２．５文献标识码：A文章编号：0439－８114（２０15）05－1125-05
DOI：10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2015.05.025
收稿日期：２０１４－０６－３０
作者简介：李 清（１９８８－），男，河南信阳人，硕士，研究方向为作物遗传育种，（电话）１８６５０７３２４８０（电子信箱）ｌｉｑｉｎｇｓｔｕｄｙ＠１６３．ｃｏｍ；通信作者，
潘大仁（１９４９－），男，教授，博士生导师，（电话）０５９１－８３７５９４５９（电子信箱）ｐｄｒ８５９８＠１６３．ｃｏｍ。
泽泻是一种常见的中药材，是由泽泻科（Ａｌｉｓｍａｔａｃｅａｅ）多年生植物泽泻［Ａｌｉｓｍａ ｏｒｉｅｎｔａｌｅ（Ｓａｍｕｅｌｓ）Ｊｕｚｅｐ．］的块茎干燥炮制而成。泽泻性味甘淡寒，归肾、膀胱经，具有利水渗湿、泄热和化浊降脂的功效，用于小便不利、水肿胀满、泄泻尿少、痰饮眩晕、热淋涩痛和高血脂等［１］。泽泻的主要化学成分为三萜类物质，其中最主要的药用成分为２３－乙酰泽泻醇Ｂ［２］。近年来，随着人们对２３－乙酰泽泻醇Ｂ的深入研究，发现２３－乙酰泽泻醇Ｂ具有很多非常重要的生物活性［３］，如抗癌［４］、诱导多种肿瘤细胞的凋亡［５］和抑制乙肝病毒抗原活性［６］等作用。
诱导子（Eｌｉｃｉｔｏｒｓ）是一种特殊的诱发因子，能够开启植物体内代谢过程中酶的活性，因而能够显著地增加植物中次生代谢产物的含量，有时候甚至能诱导植物产生出新的次生代谢产物。目前，诱导子已经广泛应用于许多中药材次生代谢产物的生产中，如人参［７］、鱼腥草［８］、丹参［９］、藏红花、黄芩等。但是诱导子在泽泻中的研究却鲜有报道。为此，试验采用水杨酸、赤霉素和脱落酸三种诱导子分别处理泽泻，研究泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的变化。
１ 材料与方法
１．１ 材料
试验于２０１３年７月至２０１４年１月在福建农林大学试验田进行，供试材料泽泻种子为福建中医药大学吴锦忠教授提供。泽泻种子于2013年７月８日播种育苗，苗期４０ ｄ，2013年８月１８日移栽至大田，大田前作为水稻。
试剂：乙腈为色谱纯（德国Ｍｅｒｃｋ公司），水为娃哈哈超纯水，标准品２３－乙酰泽泻醇Ｂ购于国家标准物质信息中心，水杨酸、赤霉素、脱落酸、无水乙醇、石油醚、甲醇、丙酮、乙酸乙酯等均为国产分析纯。
仪器：烘干箱（上海精宏）、ＦＹ１３５中草药粉碎机、ＢＳ１２４Ｓ 型电子天平、３２００ ＩＨ 型超声波清洗器、ＵＶ １７００－１８００紫外可见分光光度计（上海凤凰光学科技有限公司）、美国Ｗａｔｅｒｓ ２６９５高效液相色谱仪、Ｗａｔｅｒｓ ２９９６检测器。
１．２ 方法
１）试验设计。选择植物形态、营养状况相近的盆栽泽泻植株４５盆，３次重复，每个重复１５盆。在相同的栽培条件，将１５盆泽泻分成３组放置于水田中，每组５盆纵向摆放，保持４０ ｃｍ的间距，每组喷施一种不同种类的诱导子（水杨酸、赤霉素、脱落酸），每组中５盆植株喷施的诱导子的浓度分别为 ０、５０、１００、１５０、２００ μｇ／ｍＬ（诱导子都采用１％乙醇溶解）。喷施诱导子之前取样一次作为对照，之后在处理的第４、８、１２、１６天分别取样一次，采用高效液相色谱法检测各个样品中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量。
２）标准品溶液的制备。称取标准品２３－乙酰泽泻醇Ｂ ４ ｍｇ，置于５ ｍＬ的离心管中，取４ ｍＬ色谱纯乙腈短暂超声混匀，制成１ ｍｇ／ｍＬ的标准品储备液。０．２２ μｍ滤头过滤备用。
３）材料准备。泽泻样品在烘干箱中经６０ ℃干燥至恒重。干燥后的样品用ＦＹ１３５中草药粉碎机粉碎，过８０目筛，备用。精密称取样品粉末０．３ ｇ，加入２０ ｍＬ石油醚，超声处理（功率２００ Ｗ，频率４０ ｋＨｚ）３０ ｍｉｎ，滤纸过滤。滤液经旋转蒸发仪蒸干，加入１ ｍＬ色谱纯乙腈溶解蒸干的样品，溶液用０．２２ μｍ滤头过滤，备用［１０，１１］。
４）统计分析。数据采用Ｅｘｃｅｌ和ＤＰＳ软件进行分析。
２ 结果与分析
２．１ ２３－乙酰泽泻醇Ｂ的检测
采用高效液相色谱法检测，色谱柱：Ｗａｔｅｒｓ Ｃ１８柱（４．６ ｍｍ×２５０ ｍｍ，５ μｍ）；柱温：室温；流动相：乙腈－水（８０∶２０，V/V）；流速：０．８ ｍＬ／ｍｉｎ，检测波长：２０８ ｎｍ；进样量：２０ μＬ，进样时间：２０ ｍｉｎ［１２，１３］。结果见图１和图２。
２．２ 方法学考察
２．２．１ 精密度试验 精密吸取３００ μｇ／ｍＬ的２３－乙酰泽泻醇Ｂ标准品溶液，重复进样６次， 每次进样体积２０ μＬ。测得２３－乙酰泽泻醇Ｂ峰面积的ＲＳＤ为１．７０％，表明该仪器的精密度良好。
２．２．２ 重复性试验 精密称取同一批的泽泻粉末６份，依照上述方法制备供试溶液，进样检测。结果表明２３－乙酰泽泻醇Ｂ峰面积的ＲＳＤ为１．７４％，说明该方法重复性较好。
２．２．３ 稳定性试验 精密称取泽泻粉末０．３ ｇ， 依照上述方法制备供试溶液，分别在１、２、４、８、１２ ｈ进样检测，结果表明２３－乙酰泽泻醇Ｂ峰面积的ＲＳＤ为０．９３％，说明从泽泻中提取的２３－乙酰泽泻醇Ｂ在１２ ｈ内稳定性较好。
２．２．４ 加样回收率试验 精密称取泽泻块茎粉末６份，每份０．３ ｇ，其中３份加入０．２ ｍＬ的浓度为３００ μｇ／ｍＬ的２３－乙酰泽泻醇Ｂ标准品溶液，３份不加，依照上述方法制备供试溶液，进样检测。结果表明２３－乙酰泽泻醇Ｂ的平均回收率为９８．１％，ＲＳＤ为３．１０％。
２．３ ２３－乙酰泽泻醇Ｂ标准曲线的绘制
将２３－乙酰泽泻醇Ｂ标准品储备液配制成２５、５０、１００、２００、３００、４００、５００ μｇ／ｍＬ的标准样品。按色谱条件，每个浓度进样２０ μＬ，重复进样３次，取峰面积的平均值。以标准样品浓度Ｘ为横坐标，以峰面积Ｙ为纵坐标绘制标准曲线。２３－乙酰泽泻醇Ｂ的标准曲线为
＝２５ ３２７ Ｘ－４８ ６６５，Ｒ２＝ ０．９９９ ６，线性范围为２５～５００ μｇ／ｍＬ，结果见图３。
２．４ 不同诱导子对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ积累的影响
２．４．１ 水杨酸处理对２３－乙酰泽泻醇Ｂ积累的影响 采用０、５０、１００、１５０、２００ μｇ／ｍＬ五个不同浓度的水杨酸对盆栽泽泻进行处理，在处理的第０、４、８、１２、１６天分别取样，利用ＨＰＬＣ法测定样品中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量，结果如图４。
由图４可知，不同浓度的水杨酸处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量有一定的影响。５０ μｇ／ｍＬ的水杨酸处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先上升后下降的趋势，并在第８天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量达到最大值３９１．６ μｇ／ｇ，是对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的３．１３倍。１００ μｇ／ｍＬ的水杨酸处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先上升后下降的趋势，并在第８天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量达到最大值４２０．２ μｇ／ｇ，是对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的３．３６倍。１５０ μｇ／ｍＬ的水杨酸处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先上升后下降的趋势，并在第８天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量达到最大值７１５．４ μｇ／ｇ，是对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的５．７２倍。２００ μｇ／ｍＬ的水杨酸处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先下降后上升的趋势，并在第８天达到了最低值６６．７ μｇ／ｇ，为对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的５３．3％。
采用ＤＰＳ软件对不同浓度水杨酸处理后样品中２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量进行二因素方差分析，结果见表１、表２和表３。
由表１、表２和表３可知，１５０ μｇ／ｍＬ水杨酸处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量具有明显的促进作用，与对照相比差异极显著。１００ μｇ／ｍＬ和５０ μｇ／ｍＬ水杨酸处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量具有明显的促进作用，但与对照相比差异不显著。２００ μｇ／ｍＬ水杨酸处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量具有抑制作用，但与对照差异不显著。处理时间对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的影响作用不明显，只有第８天表现出明显的促进作用，与对照和16 d处理相比差异极显著，与其他处理相比差异显著。
２．４．２ 赤霉素处理对２３－乙酰泽泻醇Ｂ积累的影响
采用０、５０、１００、１５０、２００ μｇ／ｍＬ五个不同浓度的赤霉素对盆栽泽泻进行处理，在处理的第０、４、８、１２、１６天分别取样，利用ＨＰＬＣ法测定样品中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量，结果如图５。
由图５可知，不同浓度的赤霉素处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量有一定的影响。５０ μｇ／ｍＬ的赤霉素处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先上升后下降的趋势，并在第１２天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量达到最大值２４８．５ μｇ／ｍＬ，是对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的１．７９倍。１００ μｇ／ｍＬ的赤霉素处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先上升后下降的趋势，并在第８天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量达到最大值４６２．３ μｇ／ｇ，是对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的３．４９倍。１５０ μｇ／ｍＬ的赤霉素处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先上升后下降的趋势，并在第８天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量达到最大值２８５．３ μｇ／ｇ，是对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的２．１５倍。２００ μｇ／ｍＬ的赤霉素处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先下降后上升的趋势，并在第８天达到了最低值６６．４ μｇ／ｇ，是对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的５０．１％。
采用ＤＰＳ软件对不同浓度赤霉素处理后样品中２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量进行二因素方差分析，结果见表４、表５和表６。
由表４、表５和表６可知，１００ μｇ／ｍＬ赤霉素处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量具有明显的促进作用，与对照相比差异极显著。１５０ μｇ／ｍＬ和５０ μｇ／ｍＬ赤霉素处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量具有明显的促进作用，但与对照相比差异不显著。２００ μｇ／ｍＬ赤霉素处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量具有抑制作用，但与对照相比差异不显著。处理时间对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的影响作用不明显，只有第８天表现出明显的促进作用，与对照和第１６天相比差异显著，其他处理间均差异不显著。
２．４．３ 脱落酸处理对２３－乙酰泽泻醇Ｂ积累的影响 采用０、５０、１００、１５０、２００ μｇ／ｍＬ五个不同浓度的脱落酸对盆栽泽泻进行处理，在处理的第０、４、８、１２、１６天分别取样，利用ＨＰＬＣ法测定样品中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量，结果如图６。
由图６可知，不同浓度的脱落酸处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量都是有一定的影响。５０ μｇ／ｍＬ的脱落酸处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先上升后下降的趋势，并在第１２天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量达到最大值１７８．４ μｇ／ｍＬ，是对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的１．２０倍。１００ μｇ／ｍＬ的脱落酸处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先上升后下降的趋势，并在第８天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量达到最大值２５６．０ μｇ／ｇ，是对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的１．６８倍。１５０ μｇ／ｍＬ的脱落酸处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先上升后下降的趋势，并在第８天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量达到最大值３９３．６ μｇ／ｇ，是对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的２．５９倍。２００ μｇ／ｍＬ的赤霉素处理下，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先下降后上升的趋势，并在第１２天达到了最低值１０２．７ μｇ／ｇ，是对照２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的６９．１％。
采用ＤＰＳ软件对不同浓度脱落酸处理后样品中２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量进行二因素方差分析，结果见表７、表８和表９。
由表７、表８和表９可知，１５０ μｇ／ｍＬ脱落酸处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量具有明显的促进作用，与对照相比差异极显著。１００ μｇ／ｍＬ和５０ μｇ／ｍＬ脱落酸处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量具有明显的促进作用，但与对照相比差异不显著。２００ μｇ／ｍＬ脱落酸处理对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量具有抑制作用，但与对照相比差异不显著。处理时间对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ含量的影响作用不明显，只有处理第８天时与对照差异显著。
３ 小结与讨论
试验结果表明，不同类型以及不同浓度的外源诱导子对泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的累积会产生一定影响，但其影响程度不同。从总体趋势来看，在使用诱导子处理后的一段时间内，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量呈先上升后下降的趋势。从浓度上看，3种不同的诱导子在低浓度下都能促进泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的积累，在高浓度下则表现出一定的抑制作用。
水杨酸是各种植物体内都普遍存在的一种小分子的酚类物质，大量试验证明，外源水杨酸进入植物体内，能够有效促进植物生长发育，诱导植物种子的萌发，调节植物体内乙烯的合成，诱导植物自身抗病、抗虫、抗干旱、抗盐胁迫等防御反应［１４］。水杨酸通过对植物体内一系列生理生化反应的调节，最终能提高植物代谢产物的产量。本研究中水杨酸处理后，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量表现出明显的上升趋势，其中１５０ μｇ／ｍＬ的水杨酸处理第８天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量为７１５．４ μｇ／ｇ，为所有处理中的最大值。这些结果可能与水杨酸能够促进植物的生长发育和诱导植物的抗逆性有关。
赤霉素是一大类广泛存在的植物激素，具有很强的生物活性。在植物体内能够促进茎叶的伸长生长，加速细胞分裂，促进细胞纵向生长，抑制侧芽的休眠等［１５］。本研究中赤霉素处理后，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量表现出明显的上升趋势，其中１００ μｇ／ｍＬ的赤霉素处理第８天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量为４６２．３ μｇ／ｇ，诱导效果与水杨酸相比较差。
脱落酸作为一种重要的植物激素在植物的生长发育过程中起着重要的作用，能够促进植物叶片和果实的脱落、促使植物的芽休眠并且抑制其萌发、抑制植物生长、促进植物衰老等。脱落酸还能够诱导植物对各种不同的不良环境产生抗性，如抗旱性、抗病性、抗寒性和耐盐性等［１６，１７］。试验中脱落酸处理后，泽泻中２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量表现出明显的上升趋势，其中１５０ μｇ／ｍＬ的脱落酸处理第８天时２３－乙酰泽泻醇Ｂ的含量为３９３．６ μｇ／ｇ，诱导效果与水杨酸相比较差。这种结果可能是由于脱落酸能够抑制植物的生长造成的。
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（责任编辑 王晓芳）